DNA METHYLATION DETECTION METHODS
    1.
    发明申请
    DNA METHYLATION DETECTION METHODS 审中-公开
    DNA甲基化检测方法

    公开(公告)号:WO2010022098A2

    公开(公告)日:2010-02-25

    申请号:PCT/US2009054220

    申请日:2009-08-18

    CPC classification number: C12Q1/6827 C12Q2537/164 C12Q2522/101

    Abstract: The present teachings provide DNA methylation quantification methods that avoid bisulfite treatment of DNA. Methylation-specific binding proteins (MeDNA binding proteins) and non-methylation specific binding proteins (non-MeDNA binding proteins) are employed in various embodiments to modulate the accessibility of nucleic acids to primer extension reactions. After selectively removing the target nucleic acids, the extension products can be analyzed and methylation quantitated. In some embodiments, the analysis comprises real-time PCR.

    Abstract translation: 本教导提供了避免亚硫酸氢盐处理DNA的DNA甲基化定量方法。 甲基化特异性结合蛋白(MeDNA结合蛋白)和非甲基化特异性结合蛋白(非MeDNA结合蛋白)用于各种实施方案中以调节核酸对引物延伸反应的可及性。 在选择性除去靶核酸后,可以分析延伸产物并定量甲基化。 在一些实施方案中,分析包括实时PCR。

    Captura, detección y cuantificación de ARN pequeño

    公开(公告)号:ES2749463T3

    公开(公告)日:2020-03-20

    申请号:ES13795633

    申请日:2013-11-04

    Abstract: Un método para detectar un ARN pequeño maduro, comprendiendo el método: proporcionar una muestra que comprende una molécula de ARN pequeño que comprende aproximadamente 20-30 nucleótidos que se ha procesado a partir de un precursor de ARN más grande (ARN pequeño maduro); poliadenilar el extremo 3' del ARN pequeño maduro; realizar la transcripción inversa del ARN pequeño maduro poliadenilado usando un cebador de transcripción inversa universal, de modo que se forma así un ADNc del ARN pequeño maduro, en donde el cebador de transcripción inversa universal comprende una parte de poli(T) y una parte de cola, en donde la parte de cola comprende una parte de cebador universal; ligar un adaptador de ligadura universal al extremo 3' del ADNc en presencia de una férula de ligadura, en donde la férula de ligadura comprende una región terminal 3' que contiene de aproximadamente 3 nucleótidos a aproximadamente 6 nucleótidos que se hibridan con el extremo 3' del ADNc del ARN pequeño maduro y una región terminal 5' que se hibrida con el extremo 5' del adaptador de ligadura, de modo que se forma un producto de ligadura de ADNc; amplificar el producto de ligadura de ADNc usando un par de cebadores directo e inverso universales para formar un producto de amplificación; y detectar el producto de amplificación.

    Nuevas composiciones y métodos para mejorar la especificidad de la PCR

    公开(公告)号:ES2800075T3

    公开(公告)日:2020-12-23

    申请号:ES17186097

    申请日:2013-11-04

    Abstract: Un cebador oligonucleotidico que comprende una secuencia de etiqueta de Restriccion de amplificacion dirigida a secuencia (STAR) 5' y una secuencia de hibridacion del acido nucleico objetivo, en donde la secuencia de la etiqueta STAR es capaz de formar una estructura de tallo-lazo tras la extension del oligonucleotido a lo largo del acido nucleico objetivo, en donde la secuencia de la etiqueta STAR comprende una secuencia igual a la totalidad o a una parte de una parte de hibridacion del acido nucleico objetivo de un segundo cebador para usarse con el oligonucleotido en una reaccion de amplificacion, o en donde la secuencia de la etiqueta STAR es complementaria a todo o a una parte del sitio de union objetivo de un segundo cebador para usarse con el cebador oligonucleotidico en una reaccion de amplificacion; y en donde el cebador oligonucleotidico y el segundo cebador son un par de cebadores directo e inverso.

    METHODS AND SYSTEMS FOR QUANTIFICATION WITHOUT STANDARD CURVES

    公开(公告)号:SG11201606778TA

    公开(公告)日:2016-09-29

    申请号:SG11201606778T

    申请日:2015-01-20

    Abstract: A method for quantitation of biological material in a biological sample is provided. The method includes receiving amplification data from amplification of a first and a second reference sample and receiving amplification data from amplification of a biological sample. The method further includes determining an efficiency from the received amplification data from amplification of the first and second reference sample. The method includes determining a relative PCR efficiency for the biological sample. Next, the method includes determining a quantity of biological material in the biological sample using the relative PCR efficiency.

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